產(chǎn)品中心
PRODUCT CENTER
糖蛋白和抗體結(jié)合試劑盒(II)
貨號(hào) |
產(chǎn)品名稱 |
產(chǎn)品規(guī)格 |
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FD107 |
BcMag? 糖蛋白和抗體結(jié)合試劑盒(II) |
一個(gè) |
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存儲(chǔ)條件 |
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2.5μm BcMag? 可分離式酰肼基磁珠 |
4℃ |
150mg |
10x結(jié)合緩沖器 |
4℃ |
10ml |
氧化劑(NaIO4) |
4℃ |
100mg |
5 x洗滌緩沖液 |
4℃ |
15ml |
10xPBS |
4℃ |
5.0ml |
儲(chǔ)存:收到產(chǎn)品時(shí),將試劑盒儲(chǔ)存在4oC。
BcMag ? 糖蛋白和抗體結(jié)合試劑盒能夠運(yùn)用蛋白質(zhì)上羰基酮或醛的相似基團(tuán)在生物化合物中形成固定位點(diǎn)。這些位點(diǎn)使共價(jià)結(jié)合位點(diǎn)遠(yuǎn)離活性中心或結(jié)合區(qū)域。糖復(fù)合物如糖蛋白和糖脂在相鄰碳原子上含有具有羥基的糖殘基。用高碘酸鈉氧化這些順式二醇就會(huì)產(chǎn)生可用作共價(jià)固定位點(diǎn)的醛基。
本試劑盒使用酰肼基活化磁珠和特定催化劑產(chǎn)生與糖蛋白和抗體的親和力。單克隆抗體和糖基化蛋白可以用高碘酸鹽氧化的碳水化合物基團(tuán)固定,以產(chǎn)生可重復(fù)使用的親和基質(zhì)。這種使用酰肼基團(tuán)化學(xué)固定的抗體,具有抗原結(jié)合位不會(huì)受到阻礙的有點(diǎn),和對(duì)抗體具有優(yōu)良的純化能力。在含有催化劑的,簡(jiǎn)單的非胺緩沖液中,完全偶聯(lián)只需要2至4小時(shí)??贵w和常見(jiàn)糖蛋白的偶聯(lián)效率通常大于85%,每毫克的酰肼基磁珠可以固定15μg至20μg蛋白。用穩(wěn)定的糖蛋白或抗體制備的基質(zhì)可以再生并重復(fù)使用至少五次,而不會(huì)明顯喪失結(jié)合能力。
BcMag ? 酰肼基磁珠是在表面連接有高密度酰肼官能團(tuán)的均勻磁珠。酰肼基磁珠可通過(guò)低聚糖部分,定點(diǎn)固定含醛或酮的配體,例如抗體、凝集素、糖蛋白、糖和碳水化合物等。而且,酰肼基僅在Fc區(qū)域或附近結(jié)合,不會(huì)對(duì)抗體功能產(chǎn)生不利影響。以這種選擇性地與靶向分子Fc部分的重鏈結(jié)合的方式偶聯(lián)抗體,有助于Fv區(qū)域末端盡可能最好地保存抗原結(jié)合活性。在pH 5至7條件下,酰肼基的載體和化合物將與氧化碳水化合物的羰基結(jié)合,從而產(chǎn)生腙鍵(圖1)。酰肼基磁珠珠適合結(jié)合較大的糖蛋白和糖脂,碳水化合物或其他配體。它的親水性表面基團(tuán)保證了磁珠在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,具有極低的非特異性吸附率、且有良好的分散性,并易于在各種緩沖液中處理。
工作流程
本款磁珠可以完美地作為親和樹(shù)脂進(jìn)行親和純化,將分子、細(xì)胞和部分細(xì)胞提取物進(jìn)行提煉純化。在與配體結(jié)合后,將磁珠添加到含有目標(biāo)分子的樣品中,然后混合、孵育、洗滌和洗脫目標(biāo)分子。
功能和優(yōu)點(diǎn)。
· 特異性的固定反應(yīng)------酰肼基活化磁珠僅會(huì)與,已被高碘酸鹽(例如唾液酸)輕度氧化的,含有糖基的純糖蛋白結(jié)合。
· 穩(wěn)定的共價(jià)鍵,低水平的配體泄漏
· 維持抗體功能-----通過(guò)Fc區(qū)固定IgG,保留兩個(gè)抗原結(jié)合位點(diǎn),均可用于靶目標(biāo)的捕獲。
· 極低的非特異性結(jié)合率
· 極高的固定容量:15-20μg抗體/mg磁珠。
操作協(xié)議
提示
l 強(qiáng)烈建議在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中進(jìn)行滴定優(yōu)化,以確定每個(gè)實(shí)驗(yàn)中應(yīng)用的磁珠數(shù)量。該協(xié)議可以相應(yīng)地放大和縮小。
l 應(yīng)避免使用含有伯胺基團(tuán)或糖類的Tris或其他緩沖液,因?yàn)樗鼈儠?huì)與預(yù)期的
偶聯(lián)反應(yīng)物競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合磁珠。
所需耗材
1.磁力分離器(適用于手動(dòng)操作):根據(jù)實(shí)驗(yàn)時(shí)生物樣品的體積,使用者可以選擇一下不同型號(hào)的磁力分離器:
BcMag? separator-2可以容納兩個(gè)單獨(dú)的1.5 ml離心管(Cat.# MS-01);
BcMag? separator-6可以容納六個(gè)單獨(dú)的1.5 ml離心管(Cat.# MS-02);
BcMag? separator-24可以容納24個(gè)單獨(dú)的1.5-2.0 ml離心管(Cat.# MS-03);
BcMag? separator-50可以容納一個(gè)單獨(dú)的50 ml離心管,一個(gè)15ml的離心管,以及四個(gè)1.5ml離心管(Cat.# MS-04);
BcMag? separator-96 可以配合96 ELISA板使用 (Cat.#MS-05).
2.Coupling Buffer: 0.1 M 磷酸鈉, pH 7.0
3.氧化劑: Sodium meta-Periodate (NaIO4) (Sigma, Cat# S1878)
4.Washing Buffer: 1M NaCl
5.PBS
配體的偶聯(lián)反應(yīng)
A. 磁珠的準(zhǔn)備
1.稱取30 mg磁珠,并將其加入到1.5 ml離心管中。
2.加入1毫升coupling buffer,并通過(guò)渦旋或移液器吹吸方式將磁珠充分懸浮。
3.將試管放在磁力分離器上1-3分鐘。當(dāng)磁珠完全沉淀時(shí),去除上清液。
4.將清洗的磁珠準(zhǔn)備進(jìn)行耦合反應(yīng)。
B.糖蛋白或其他配體的氧化
注意:該反應(yīng)對(duì)光敏感,應(yīng)在黑暗中進(jìn)行。
1.將0.5-10 mg糖蛋白或者其他配體溶解或稀釋于1 ml Coupling Buffer中。(注:如果蛋白質(zhì)或者其他配體已經(jīng)懸浮在其他緩沖液中,則通過(guò)透析脫鹽柱進(jìn)行緩沖液交換。)
2.將蛋白質(zhì)其他配體溶液添加到含有2 mg高碘酸鈉(最終濃度為10 mM)的棕色小瓶中。輕輕旋轉(zhuǎn)以溶解氧化劑。
3.在室溫下,將樣品在黑暗中緩慢旋轉(zhuǎn)孵育45分鐘。
C.偶聯(lián)反應(yīng)
1. 將氧化后的蛋白質(zhì)或其他配體溶液添加到步驟A4制備的磁珠中,并通過(guò)旋轉(zhuǎn)或移液器吹吸方式充分混合。
提示:偶聯(lián)效率取決于目標(biāo)糖蛋白或其他配體的結(jié)構(gòu)和大小。用戶應(yīng)根據(jù)經(jīng)驗(yàn)優(yōu)化蛋白質(zhì)與磁珠的比例。
2. 在室溫下,在黑暗中孵育反應(yīng)過(guò)夜,過(guò)程中保持充分混合
3. 將試管放在磁力分離器上1-3分鐘。當(dāng)磁珠完全沉淀時(shí),去除上清液。取下試管,用5ml的Coupling buffer通過(guò)渦懸或者吹吸重新懸浮磁珠。
4. 重復(fù)步驟3三次。
5. 用含有0.1%疊氮化物(w/v)的PBS緩沖液重新懸浮磁珠至所需濃度,在4°C下儲(chǔ)存,直至使用。不要冷凍保存。
D、常見(jiàn)親和純化過(guò)程
提示:
l 該方案是一個(gè)通用的親和純化發(fā)法。因?yàn)闆](méi)有兩種蛋白質(zhì)是完全相同的,所以不可能為所有的蛋白質(zhì)純化設(shè)計(jì)一個(gè)通用的協(xié)議。為了獲得最佳結(jié)果,每個(gè)用戶必須確定純化單個(gè)目標(biāo)蛋白的最佳工作條件。
l 避免在binding buffers 和 washing buffers中使用還原劑。
l 強(qiáng)烈建議根據(jù)粗樣品中目標(biāo)蛋白質(zhì)的含量,進(jìn)行滴定,以優(yōu)化每個(gè)單獨(dú)實(shí)驗(yàn)中使用的磁珠數(shù)量。使用過(guò)多的磁珠
將導(dǎo)致較高的背景,而使用過(guò)少的磁珠將導(dǎo)致較低的產(chǎn)量。每毫克磁珠通??膳c1-20μg靶蛋白結(jié)合。
1.將適量的珠子轉(zhuǎn)移到離心管中。將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當(dāng)磁珠完全沉淀時(shí),去除上清液。
2. 取下試管,加入5倍磁珠溶液體積的PBS緩沖液,通過(guò)震蕩重新懸浮磁珠,渦旋30
秒。將試管至于室溫環(huán)境1-3分鐘,再將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當(dāng)磁珠完全沉淀時(shí),去除上清液。
3.重復(fù)步驟2 兩次。
4. 向含有目標(biāo)蛋白質(zhì)的粗樣品中添加洗滌過(guò)的磁珠,并在室溫或所需溫度下溫浴1-2小時(shí)(溫度越低,培養(yǎng)時(shí)間越長(zhǎng))。
提示:強(qiáng)烈建議進(jìn)行滴定實(shí)驗(yàn)以優(yōu)化培養(yǎng)時(shí)間。因?yàn)榉趸臅r(shí)間太長(zhǎng)可能會(huì)導(dǎo)致很高的背景。
5. 用5倍磁珠體積的PBS緩沖液或1M NaCl徹底清洗磁珠,直到280nm處洗脫液的吸光度接近背景水平(OD 280<0.05)。
提示:添加更高濃度的鹽、非離子洗滌劑和還原劑也可能會(huì)降低非特異性背景。例如,向洗滌緩沖液中添加NaCl(濃度為1-1.5 M)、0.1-0.5%的非離子洗滌劑,如Triton X-100或Tween-20,以及還原劑,如DTT或TCEP(我們通常使用3mM)。
6. 通過(guò)適當(dāng)?shù)姆椒?,如?/span>pH(2-4)、高pH(10-12)、高鹽、高溫、親和洗脫或SDS-PAGE加載緩沖液中煮沸,洗脫目標(biāo)蛋白。
7.切斷二硫鍵
提升:由于配體之間的構(gòu)象不同,用戶應(yīng)確定最佳工作條件,如還原劑、pH值和溫度,以切割單個(gè)配體的二硫鍵。以下是從磁珠上切割共軛的GFP蛋白的示例。
1)在140 mMβ-巰基乙醇或5 mM DTT(二硫蘇糖醇)中孵育磁珠(30mg/ml)。
a. 在 100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 140 mM β-巰基乙醇條件下,室溫2小時(shí)或
者過(guò)夜孵育,或者在98℃條件下5分鐘。
b. 在100 mM Tris-HCl, pH 8.0, 50 mM EDTA, 5mM DTT條件下,室溫2小時(shí)或者過(guò)夜孵
育,或者在98℃條件下5分鐘。