產(chǎn)品中心
PRODUCT CENTER
快速mRNA純化試劑盒：完整Poly（A）+RNA提取的最終解決方案
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貨號(hào) |
產(chǎn)品名稱 |
規(guī)格 |
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MMS101 |
BcMag? 快速mRNA純化試劑盒 |
2ml磁珠試劑盒 |
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MMS102 |
BcMag? Oligo dT磁珠 |
4ml |
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組分 |
存儲(chǔ)條件 |
目錄號(hào)：MMS101 |
目錄號(hào)：MMS102 |
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BcMag? Oligo-dT Magnetic beads |
4°C |
2 ml |
4 ml |
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1x Binding/ Lysis Buffer |
4°C |
10 ml |
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10x Washing Buffer I |
4°C |
5ml |
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10x Washing Buffer II |
4°C |
5 ml |
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Elution Buffer |
4°C |
0.5 ml |
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從細(xì)胞中分離mRNA的逐步說明為了從小樣本量中快速簡單地純化高質(zhì)量的mRNA，Bioclone提供了快速mRNA純化試劑盒。
Poly（A）+RNA提取是許多下游應(yīng)用中的關(guān)鍵步驟，例如qRT-PCR，RNA測(cè)序和微陣列分析。然而，傳統(tǒng)的RNA分離方法有許多缺點(diǎn)，如苯酚-氯仿提取法，使用有機(jī)溶劑，耗時(shí)，且勞動(dòng)密集，對(duì)人體健康有害。因此，迫切需要一種快速有效的poly（a）+RNA提取方法，以確保分離完整的mRNA分子。
BcMag? 快速mRNA純化試劑盒是一種新型提取工具，旨在從細(xì)胞和組織樣品中提取完整的poly（a）+RNA。與使用苯酚等化學(xué)溶劑的其他方法不同，該試劑盒使用連接到1μm順磁珠上的Oligo-d（T）25直接結(jié)合poly（A）+RNA。這使得本試劑盒適用于手動(dòng)處理多個(gè)樣本或，調(diào)整流程適應(yīng)高通量自動(dòng)化應(yīng)用程序成為可能。磁珠分離技術(shù)的使用允許使用很少量洗脫液洗脫完整的mRNA，這意味著poly（A）+轉(zhuǎn)錄本不需要在洗脫液中沉淀。在不到一小時(shí)的時(shí)間內(nèi)，這種方法可以完全完成poly（A）+RNA提取，提取物可以完全代表原始樣品中的mRNA群體。
工作流程：簡單且便于使用
用磁珠純化是一個(gè)簡單且方便的過程。首先，將磁珠與細(xì)胞裂解物混合，并將其連續(xù)旋轉(zhuǎn)孵育足夠的時(shí)間。在混合過程中，磁珠保持懸浮在樣品溶液中，使mRNA與oligo-dT磁珠充分結(jié)合。核糖體RNA和微小RNA分子（transfer RNA，microRNA，小核仁RNA和小細(xì)胞質(zhì)RNA）不會(huì)粘附在磁珠上并被清除。孵育后，僅聚腺苷酸化的RNA（mRNA被收集），并使用磁力架從樣品中分離磁珠。然后洗脫純化后的mRNA并用于下游應(yīng)用。
BcMag ? 快速mRNA純化試劑盒的優(yōu)勢(shì)
? 高產(chǎn)：該試劑盒可從各種來源（例如培養(yǎng)的細(xì)胞，組織和血液）提取出高回收率的poly（a）+RNA。
? 快速高效：整個(gè)過程不到一個(gè)小時(shí)，是一種快速有效的poly（a）+RNA提取方法。
? 與自動(dòng)化系統(tǒng)兼容：該過程適用于自動(dòng)化系統(tǒng)，允許高通量應(yīng)用。
? 易于使用：該操作過程簡單明了，便于使用，可廣泛的在研究人員群體中使用。
? 完整的mRNA: BcMag? 快速mRNA純化試劑盒，可確保分離出完整的mRNA分子，這對(duì)于qRT-PCR和RNA測(cè)序等下游應(yīng)用至關(guān)重要。
BcMag ? 快速mRNA純化試劑盒的應(yīng)用
使用BcMag ? 快速mRNA純化試劑盒獲得poly（A）+RNA可用于各種下游應(yīng)用，例如：
? qRT-PCR：該試劑盒為qRT-PCR分析提供高質(zhì)量的RNA，這是一種廣泛用于基因表達(dá)分析的技術(shù)。
? RNA測(cè)序：該試劑盒可提取出適用于RNA測(cè)序的高質(zhì)量RNA，從而可以鑒定新的轉(zhuǎn)錄物和替代剪接事件。。
? 微陣列分析：該試劑盒可產(chǎn)生適合微陣列分析的高質(zhì)量RNA，可以同時(shí)分析數(shù)千個(gè)基因的表達(dá)。
一般參考文獻(xiàn)
1. Ferrier DC, Shaver MP, Hands PJW. Micro- and nano-structure-based oligonucleotide sensors. Biosens Bioelectron. 2015 Jun 15;68:798-810.
2. Sethi D, Gandhi RP, Kuma P, Gupta KC. Chemical strategies for immobilization of oligonucleotides. Biotechnol J. 2009 Nov;4(11):1513-29.
3. Zuo P, Ye BC. A novel immobilization strategy using oligonucleotide as linker for small molecule microarrays construction. Biosens Bioelectron. 2008 Jun 15;23(11):1694-700.
